Wetenschap
Een cel gaat vooruit:I-BAR-eiwitten (roze) hopen zich op op de plek waar het lamellipodium kromt. Daarbij, de cel kan lokaal het eiwit actine (groen) rangschikken en een lamellipodiale cyclus genereren. Krediet:Isabell Begemann, Milos Galic
Wanneer een individuele cel op een vlakke ondergrond wordt geplaatst, het staat niet stil, maar begint te bewegen. Dit fenomeen werd al in 1967 waargenomen door de Britse celbioloog Michael Abercrombie. onderzoekers zijn erin geslaagd te begrijpen hoe cellen deze prestatie volbrengen. Er is zoveel bekend:cellen vormen zogenaamde lamellipodia - cellulaire uitsteeksels die continu groeien en samentrekken - om zichzelf voort te stuwen naar signaalsignalen zoals chemische lokstoffen die door andere cellen worden geproduceerd en uitgescheiden. Wanneer dergelijke externe signalen ontbreken - zoals in de waarneming door Abercrombie - gaan cellen er actief naar op zoek. Daarbij, ze gebruiken zoekpatronen die ook bij haaien kunnen worden waargenomen, bijen of honden. Ze bewegen tijdelijk in één richting, stop, even ter plaatse wiebelen, en ga dan verder in een andere richting. Maar hoe behouden cellen de richting van hun beweging over een langere periode?
Onderzoekers van het Cells-in-Motion Cluster of Excellence van de Universiteit van Münster (Duitsland) rapporteren nu een antwoord op deze vraag. Ze ontdekten dat membraangeometrie volgende lamellipodiale cycli kan veroorzaken:mechanische krachten veroorzaken de vorming van membraankromming waar bepaalde eiwitten die deze geometrie herkennen samenkomen. Deze eiwitten, beurtelings, laat de cel de lamellipodia vormen. "De kromming, gegenereerd tijdens het terugtrekken bepaalt vooraf de groei van de volgende lamellipodiale cyclus. Zo activeert het mechanisme zichzelf voortdurend, " legt bioloog Dr. Milos Galic uit, junior onderzoeksgroepleider bij het Cluster of Excellence, en senior auteur van de studie. Wanneer externe signalen ontbreken, een cel stopt niet alleen om de tijd te markeren - hij gaat even in één richting en patrouilleert efficiënt in zijn omgeving. Het onderzoek is gepubliceerd in de Natuurfysica logboek.
Het startpunt van het onderzoek was een verrassende observatie die werd gedaan bij het analyseren van microscopische beelden. De onderzoekers onderzochten hoe cellen lamellipodia vormden en, als gevolg, hoe de beweging en vorm van cellen veranderden. Ze ontdekten dat de lamellipodia evolueerde over een breed scala aan maten en een zeer verschillende levensduur hadden.
"Bij de gegevens we konden geen terugkerend patroon herkennen in de groei en samentrekking van lamellipodia, " zegt hoofdauteur Dr. Isabell Begemann, een bioloog die het onderzoek uitvoerde in het kader van haar proefschrift. De onderzoekers konden vaststellen dat plaatsen van daaropvolgende lamellipodia-extensie plaatsvonden waar het celmembraan een sterke kromming ontwikkelde. Ze veronderstelden daarom dat een mechanisme dat aan deze krommingen is gekoppeld, continue bewegingscycli kan bepalen en, als gevolg, bewegingspersistentie.
Een fibroblast van een muis beweegt naar voren met behulp van een "lamellipodium". Aan je linker kant, zijaanzicht in 3D, aan de rechterkant, een dwarsdoorsnede die inzoomt op het lamellipodium. I-BAR-eiwitten (roze) hopen zich op aan het begin van het lamellipodium als gevolg van de kromming van het celmembraan. Als gevolg hiervan, de cel kan plaatselijk het eiwit actine (groen) regelen en het lamellipodium groeit weer aan. Met behulp van roosterlicht-fluorescentiemicroscopie, de onderzoekers toonden de minuscule structuren in 3D. Lamellipodia hebben een hoogte van 100 tot 200 nanometer. Krediet:Isabell Begemann, Milos Galic
Biologen, biochemici en natuurkundigen werkten nauw samen om dit idee te onderzoeken. Ze ontwikkelden eerst biosensoren om sterk gekromde plaatsen op het celmembraan te labelen, en visualiseerden ze door verschillende middelen van microscopie met hoge resolutie. Hiertoe, ze verbonden fluorescerende moleculen met zogenaamde I-BAR-domeinen. Dit zijn banaanvormige eiwitgebieden waarvan de positief geladen kant het negatief geladen celmembraan bindt, maar alleen als het membraan gebogen is.
Door gebruik te maken van deze biosensoren, de onderzoekers konden aantonen dat de kromminggevoelige eiwitten zich ophopen op plaatsen waar het lamellipodium samentrekt. Eenmaal verrijkt, deze eiwitten induceren uitstekende krachten in de cel via het eiwit actine, die de uitgroei van het lamellipodium in gang zet. In een volgende stap, de onderzoekers ontwikkelden een wiskundig model dat het mechanisme reconstrueert en simuleerden het op de computer met behulp van verschillende parametercombinaties. Door de voorspellingen die zijn afgeleid van het wiskundige model te vergelijken met aanvullende experimentele beeldgegevens, werden de tot nu toe gevonden resultaten verder versterkt.
De onderzoekers vonden bewijs voor de aanwezigheid van het geïdentificeerde motiliteitsmechanisme in celcultuurmodellen, bijvoorbeeld, in bindweefselcellen afkomstig van muizen, in menselijke bloedvatcellen van de navelstreng, en ook in menselijke immuuncellen, d.w.z. een celtype dat inderdaad vrij in het organisme beweegt. Eindelijk, de onderzoekers wilden ook weten welke effecten het voorgestelde mechanisme had op het beweeglijkheidspatroon van een cel.
"We hebben de I-BAR-eiwitten naar beneden gereguleerd, waardoor we het zelforganisatiesysteem van de cel kunnen hacken, " zegt Milos Galic. Zonder het mechanisme, de cel kan nog steeds bewegen, maar het zoekgebied wordt aanzienlijk kleiner. Parallel aan dit mechanisme er zijn andere machines die met elkaar verweven zijn, maar het mechanisme heeft invloed op het beweeglijkheidspatroon van een cel. De resultaten van het onderzoek kunnen, in de toekomst, helpen bij het beantwoorden van fundamentele vragen over processen in organismen waarbij vrij bewegende cellen betrokken zijn.
Nucleïnezuren zijn kleine stukjes materie met grote rollen om te spelen. Genoemd naar hun locatie - de kern - deze zuren dragen informatie die cellen helpt bij het maken va
Wetenschap © https://nl.scienceaq.com